一、溶剂对甘草黄酮和甘草酸提取率影响的研究（论文文献综述）
乙凯强[1]（2021）在《甘草中活性成分连续提取纯化及多孔炭材料制备工艺研究》文中进行了进一步梳理本文主要对甘草中的活性物质甘草酸、甘草多糖、甘草总黄酮进行连续提取,并分别研究了它们的纯化工艺;再以甘草渣为原料,制备多孔炭电极材料,并探究其电化学性能,从而实现甘草综合利用和提高其经济价值的目的。1.以甘草为原料,通过单因素与正交实验对甘草酸的提取、纯化工艺进行筛选与优化,得到最佳提取工艺条件:采用热回流提取方式、0.1%氨水溶液为溶剂、固液比1:10、温度85℃、提取时间3 h、提取2次,甘草酸的最高收率达9.05%;最佳纯化工艺条件:采用酸沉工艺纯化,浓缩倍数为6倍、p H为1.5、沉降12 h,甘草酸粗品含量为54.18%,收率达4.08%。2.以甘草酸粗品为原料,通过单因素与正交实验对甘草酸粗品复溶以及制备甘草酸单钾盐的最佳工艺条件筛选,得到最佳复溶工艺条件:固液比1:10、提取2 h、提取温度50℃、提取2次,甘草酸粗品的复溶率达92.3%。甘草酸单钾盐最佳制备工艺条件:p H为7.5、冰醋酸用量为1倍、95%乙醇用量为20倍、沉降时间12 h,甘草酸单钾盐最佳收率为59.50%,含量为72.32%。3.实验研究表明提取甘草酸时甘草多糖与甘草酸一并被提取出来,因此以前期实验甘草酸纯化工艺中获得的滤液为原料,采用单因素与正交实验对甘草多糖分离纯化的最佳工艺条件进行筛选,得到最佳工艺条件:将甘草酸滤液调p H至中性、提取液浓缩10倍、乙醇浓度为80%、醇沉16 h,甘草多糖收率为4.11%,含量为31.10%;纯化工艺采用三氯乙酸与Sevage法结合,得到按固液比1:5,三氯乙酸浓度为7%,搅拌0.5 h,过滤醇沉,得到甘草多糖为白色,含量为38.50%,收率为89.00%;在Sevage方法中,氯仿-正丁醇溶液量为原溶液的0.2倍、震荡30 min、除蛋白4次,过滤醇沉烘干得到甘草多糖平均含量为46.90%,收率为84.10%。4.以提取甘草酸、甘草多糖后的甘草渣为原料,通过单因素与正交实验进行甘草渣中总黄酮的提取及纯化工艺筛选,得到最佳提取工艺:采用热回流提取法、固液比为1:8、提取温度为80℃、时间为3 h、次数为2次,甘草总黄酮的的收率稳定在1.30%;纯化工艺采用乙酸乙酯-水超声萃取的方法,固液比1:10、萃取1 h、萃取3次,得到总黄酮含量为42.20%,收率为70.4%,同时对废液中的黄酮进行回收,最终总黄酮的含量为42.28%,收率在1.30%左右。5.对三种活性物质提取纯化工艺进行中试试验,每组以6.4 kg甘草为原料,在最佳工艺条件参数下得到如下成果:甘草酸粗品收率4.16%,含量53.20%,甘草酸单钾盐收率2.40%,含量73.40%;甘草多糖收率都稳定在3.20%左右,含量46.00%;甘草总黄酮收率在1.28%左右,含量在43.60%左右。6.以提取完活性物质的甘草渣为原料制备多孔炭作电极材料,筛选了工艺条件并对材料的电化学性能进行表征。得到的最佳工艺条件:400℃下预炭化2 h,质量比为1:1的KOH作活化剂、800℃下炭化2 h,在该条件下,材料在0.5 A/g下比电容为322 F/g,从0.5 A/g到10 A/g,电容保持率为73%,并且在1A/g的电流密度进行5000次循环充放电之后,循环性能仍能维持在93%,比表面积达到2103 m2/g。
王子剑[2]（2020）在《甘草黄酮的提取纯化与水溶性纳米粒子的制备及评价》文中指出甘草是一种极富营养和疗效的植物药,通常被广泛用作食品和药品等。到目前为止,从甘草中已分离出将近400种化学成分,包括大约300种黄酮类化合物和20种以上的三萜类化合物。甘草黄酮类化合物具有抗氧化、抗炎、抗肿瘤和皮肤美白等药理活性,但是由于其水溶性差,生物利用度低,很大地限制了甘草黄酮类化合物在食品和药品等领域中的应用。目前针对甘草黄酮的研究主要集中在药理活性和提取纯化方面,增溶研究方面较少,并且其提取纯化采用的是传统的醇提法、水提法和大孔吸附树脂法等,普遍存在成本高,耗时长,残留试剂有毒等缺点。为了更好地开发和利用甘草黄酮,本研究对乌拉尔甘草根中的甘草黄酮进行高效绿色提取,进一步分离纯化得到高纯度的甘草黄酮,并且通过反溶剂重结晶法制备了甘草黄酮纳米粒子,目的是改善其水溶性和生物利用度。研究结果如下:1、本研究以十二烷基硫酸钠为表面活性剂,采用超声微波辅助胶束提取法对甘草黄酮进行提取,通过单因素和响应面法对提取工艺参数进行优化,以甘草黄酮提取率为指标,最终得到的最优工艺参数为:十二烷基硫酸钠的质量分数为2%,液料比为21,微波功率为832 W,时间为10 min,在此最优条件下,甘草黄酮的提取率达到3.65%。采用80%乙醇热回流法对甘草黄酮重复提取3次,其提取率达到3.71%。2、采用乙酸乙酯对提取液进行预处理,重复萃取3次,合并乙酸乙酯萃取液,干燥后获得甘草黄酮粗品,纯度为36.47%,回收率为92.80%,采用液相色谱法对甘草黄酮粗品进行测定,其中刺甘草查尔酮和异甘草素的含量分别为0.55%和0.56%。采用金属络合法对黄酮粗品进行纯化,通过单因素法对工艺参数进行优化,得到的最优工艺参数为:甘草黄酮浓度为2 mg/mL,甘草黄酮与氯化钙的质量比为1:0.3,溶液pH为10。在此最优条件下获得甘草黄酮粗品,纯度为63.56%,回收率为77.27%,通过液相色谱法测得其中刺甘草查尔酮和异甘草素的含量分别为0.81%和1.46%。进一步采用反溶剂重结晶法对甘草黄酮粗品进行纯化,通过单因素和响应面法对工艺参数进行优化,最终得到的最优工艺参数为:时间为1 min,温度为27℃,反溶剂与溶剂比为 12,甘草黄酮浓度为 82 mg/mL,在此最优条件下,甘草黄酮的纯度为90.32%,回收率为88.98%,通过液相色谱法测得其中刺甘草查尔酮和异甘草素的含量分别为1.12%和2.42%。3、采用反溶剂重结晶法制备了甘草黄酮纳米混悬液,考察不同因素对甘草黄酮纳米混悬液粒径的影响,通过单因素实验方法对工艺参数进行优化,得到的最优工艺参数为:泊洛沙姆188含量为0.3%,沉积温度为40℃,搅拌速度为750 r/min,滴加速度为5 mL/min,反溶剂与溶剂的体积比12,沉积时间为20 min,甘草黄酮浓度为50 mg/mL。在此最优条件下,甘草黄酮纳米混悬液的粒径为95 nm,冻干后甘草黄酮纳米粒子粉体的粒径为108.2 nm。通过扫描电镜对甘草黄酮原药与甘草黄酮纳米粒子进行形态表征,与原药相比,甘草黄酮纳米粒子呈现出均匀的球形形态,且粒径远远小于原药的41.8μm。通过XRD,TG,DSC分析可以得出,甘草黄酮纳米粒子没有形成新的晶体,基本以一种无定形态的方式存在。对甘草黄酮纳米粒子进行溶剂残留的检测,最终得到甘草黄酮纳米粒子中的甲醇含量为22.94 ppm,残留甲醇的含量低于ICH对Ⅱ类溶剂甲醇的限量3000 ppm,符合ICH指南,可用于制药。4、测定了甘草黄酮原药和甘草黄酮-羟丙基-β-环糊精（1:0,1:1,1:2,1:3,1:4,1:5,1:6,1:7,1:8,1:9）纳米粒子冻干粉中刺甘草查尔酮、甘草查尔酮A和总黄酮在水中的饱和溶解度,甘草黄酮原药中的刺甘草查尔酮和甘草查尔酮A的饱和溶解度为0.0198 mg/mL,0.0021 mg/mL;甘草黄酮-羟丙基-β-环糊精（1:0,1:1,1:2,1:3,1:4,1:5,1:6,1:7,1:8,1:9）纳米粒子冻干粉中刺甘草查尔酮的饱和溶解度为0.14,0.46,0.63,0.70,0.79,0.73,0.76,0.77,0.72,0.69 mg/mL,甘草黄酮-羟丙基-β-环糊精（1:0,1:1,1:2,1:3,1:4,1:5,1:6,1:7,1:8,1:9）纳米粒子冻干粉中甘草查尔酮A的饱和溶解度为0.82,1.61,1.70,1.73,1.78,1.77,1.77,1.80,1.75,1.76 mg/mL,实验结果得出冻干的最优条件为:甘草黄酮与羟丙基-β-环糊精的比为1:4。甘草黄酮原药中总黄酮的饱和溶解度为 8.03 mg/mL,甘草黄酮-羟丙基-β-环糊精（1:0,1:1,1:2,1:3,1:4,1:5,1:6,1:7,1:8,1:9）纳米粒子冻干粉中总黄酮的饱和溶解度为30,170.23,181.21,183.23,200.25,197.34,196.78,198.26,186.23,187.23 mg/mL,实验结果得出冻干的最优条件为:甘草黄酮与羟丙基-β-环糊精的比为1:4,与上述实验结果一致,在此最优冻干条件下,甘草黄酮纳米粒子冻干粉中总黄酮在水中的饱和溶解度是原药的25倍。然后测定了甘草黄酮原药和甘草黄酮纳米粒子冻干粉中刺甘草查尔酮、甘草查尔酮A和总黄酮在人工肠液与人工胃液中的体外溶出率,在720 min时,甘草黄酮纳米粒子冻干粉中刺甘草查尔酮与甘草查尔酮A在人工肠液中的最大溶出率分别为51.33%和73.44%,是原药中刺甘草查尔酮与甘草查尔酮A的4.09倍和69.66倍;在720 min时,甘草黄酮纳米粒子冻干粉中刺甘草查尔酮与甘草查尔酮A在人工胃液中的最大溶出率分别为5 6.84%和97.46%,是原药中刺甘草查尔酮与甘草查尔酮A的2.63倍和8.92倍。在720 min时,甘草黄酮纳米粒子冻干粉中总黄酮在人工肠液中的最大溶出率为75.82%,是原药中总黄酮的9.63倍;在720 min时,甘草黄酮纳米粒子冻干粉中总黄酮在人工胃液中的最大溶出率为60.65%,是原药中总黄酮的11.66倍。因此该实验结果说明制备的甘草黄酮纳米粒子展现出了更高的溶出率,大大改善了甘草黄酮的水溶性。5、测定了甘草黄酮原药与甘草黄酮纳米粒子在大鼠体内的抗氧化性,当剂量为300 mg/kg,灌胃在28天时,甘草黄酮原药与甘草黄酮纳米粒子的MDA含量为2.18 nmol/mL和1.12 nmol/mL;当剂量为300 mg/kg,灌胃在14天时,甘草黄酮原药与甘草黄酮纳米粒子的CAT活性为6.09 U/mL和6.96 U/mL;当剂量为100 mg/kg,灌胃在28天时,甘草黄酮原药与甘草黄酮纳米粒子的GSH-PX活性为8.36 U/mg和9.39 U/mg;当剂量为300 mg/kg,灌胃在28天时,甘草黄酮原药与甘草黄酮纳米粒子的T-SOD活性为370.76 U/mL和392.85 U/mL;实验结果表明,相比甘草黄酮原药,甘草黄酮纳米粒子具有更强的抗氧化活性。6、测定了甘草黄酮原药与甘草黄酮纳米粒子冻干粉中刺甘草查尔酮与甘草查尔酮A在大鼠体内的生物利用度,实验结果为:在灌胃60 min之后,甘草黄酮原药中刺甘草查尔酮与甘草查尔酮A的最大血浆药物浓度达到4.98 ng/mL和24.72 ng/mL;在灌胃90 min之后甘草黄酮纳米粒子中刺甘草查尔酮与甘草查尔酮A的最大血浆药物浓度达到67.62 ng/mL和242.94 ng/mL。甘草黄酮纳米粒子中刺甘草查尔酮与甘草查尔酮A的生物利用度是原药中刺甘草查尔酮与甘草查尔酮A的10.63倍与6.54倍。7、测定了甘草黄酮纳米粒子在大鼠体内的毒性实验,在实验期间所有组的大鼠未表现出异常行为,由肝脏的组织病理学观察结果知,与对照组相比,在组织结构与细胞中没有发现明显的由药物引起的病理变化,实验结果表明在剂量达到800 mg/kg时,甘草黄酮纳米粒子对SD大鼠没有毒性,表现出良好的生物安全性。
蒋园园[3]（2019）在《甘草酸锌的清洁生产工艺研究》文中提出甘草是我国传统的中药材,其根和根茎中含有许多活性成分,甘草酸作为其中含量较多且生理活性较强的部分,由于其具有显着的抗炎、抗菌、抗肿瘤、抗病毒等多重药理作用,而被广泛的应用到医药、食品、化妆品等领域。其衍生物甘草酸锌,既具有甘草酸的药理作用,还可以作为补锌制剂,补充人体微量元素,既提高了甘草酸的利用率,也增加了其附加值。传统甘草酸提取方法有些会对环境造成污染,有些资源能源消耗较大,本文以甘草为原料,采用弱酸性溶剂进行甘草酸提取,既避免了环境的污染和资源的浪费,又获得了较高纯度的甘草酸粗品,减轻了后续甘草酸锌纯化的负担。甘草酸提取液经过膜除杂、浓缩、脱色后,采用乙醇进行萃取,以进一步对甘草酸进行纯化。由于甘草酸锌传统制备工艺复杂且得到的甘草酸锌纯度较低,本文对甘草制备甘草酸锌的工艺进行了改进并探究了其制备条件。主要研究结论如下:（1）确定了高效液相色谱法检测甘草酸的条件:采用AcclaimTM 120 C18（4.6×250mm）色谱柱,流动相:乙腈-冰醋酸-水（38:1:61）,检测波长:254nm,流速:1.0mL/min,柱温:30℃,进样量:20μL条件下测定甘草中甘草酸含量为2.67%。（2）筛选并探究甘草酸提取方法。对比水煮法、稀氨水法、氨性乙醇法及弱酸性溶剂法甘草酸的提取率及甘草酸粗品纯度,筛选甘草酸提取方法。通过单因素试验,考察甘草酸提取率的影响因素,根据响应面优化提取工艺参数,最佳提取参数为:料液比1:9 mL/g,温度90℃,时间1.5h,pH5.5,提取3次,提取率为:82.50%,甘草酸粗品纯度为29.32%,该方法减轻了甘草酸后续纯化的压力且对环境无污染。（3）探究甘草酸锌合成条件。通过实验确定了95%乙醇提取甘草酸粗品的条件为:料液比1:20,,提取时间2h,提取3次,甘草酸提取率为96.85%。根据单因素分析和正交试验确定100mL浓度为0.2mg/mL甘草酸乙醇溶液与乙酸锌乙醇溶液反应的最佳条件为:pH为5.5、乙酸锌添加量为2.3mL、搅拌时间为2.5h、反应温度为70℃。各因素影响大小顺序为:pH>搅拌时间>反应温度>乙酸锌添加量。对得到的最佳工艺条件进行验证,甘草酸锌的沉淀率为97.62%,甘草酸锌的甘草酸的纯度为90.37%。
周梦佳[4]（2019）在《汽爆辅助制备甘草甜味剂的研究》文中研究表明甘草甜味剂是一类重要的糖苷类甜味剂,具有高甜度、高生理活性和高生物利用度等特点。本文创新性地利用汽爆技术（Steam explosion,SE）处理甘草（Glycyrrhiza uralensis Fisch.）饮片,以期达到绿色高效解构甘草致密结构促进甘草中甜味成分溶解释放,并促使其中甘草酸（Glycyrrhizic acid,GL）脱糖苷转化为高倍甜味剂单葡萄糖醛酸甘草次酸（Glycyrrhetinic acid 3-O-mono-β-D-glucuronide,GAMG）及高值产物甘草次酸（18β-glycyrrhetinic acid,GA）的目的。主要研究内容和结果如下:在不同维持温度和时间下对甘草进行汽爆处理,测定甘草汽爆过程中GL转化规律及其产物GAMG和GA生成规律,在此基础上,建立GL转化反应动力学和热力学模型,揭示汽爆对GL脱糖苷作用机制及其反应规律。结果表明,汽爆过程高温热酸性环境使甘草中GL原位水解发生脱糖苷作用转化为GAMG和GA,GL转化率最高为30.71%,GA和GAMG生成率最高为21.47%和5.24%。GL的转化机理可能为从甘草结构性碳水化合物上解离的质子攻击GL糖苷配基之间的β-1,2糖苷键或糖苷配基与苷元之间的β-1,3糖苷键致使糖苷配基脱除形成GAMG或GA。反应动力学和热力学数据表明,汽爆过程GL转化为一级反应,具有吸热、熵减和非自发进行的特征,其中GL上β-1,3糖苷键比β-1,2糖苷键更易裂解,造成GA为反应主要产物,GAMG和葡萄糖醛酸为次要产物。为进一步提高GL转化效率,采用强酸（HC1）、弱碱（NH3·H2O）和强酸弱碱盐（NH4C1）类化学催化剂在汽爆前对甘草进行预处理。结果表明,HCl、NH3·H20和NH4C1催化处理GL最高转化率分别为60.05%、36.90%和28.92%,较汽爆甘草分别提高38.70%、15.55%和7.57%。HC1主要作用于促进GL裂解转化,NH3·H2O主要和GL结合形成甘草酸盐促进GL溶出,NH4C1在汽爆高温环境中分解兼具强酸、弱碱作用。因此,当以甘草甜味剂或GAMG为目标产物时可采用NH4C1为汽爆预处理催化剂,当以GA为目标产物时采用HCl为汽爆预处理催化剂。对比研究常规和催化汽爆处理甘草的宏、微观多孔结构、化学组分与官能团结构、热力学性能等理化性质变化,解析汽爆对甘草基质物性的影响规律。结果表明,汽爆兼具热改性与机械力改性作用,破解甘草细胞壁、细胞、组织水平致密结构,引起甘草水溶物最大增加31.29%、半纤维素最大降解64.03%、酸不溶性木质素最大增加1.59倍。催化汽爆进一步加剧上述现象,促进作用大小依次为:HCl>NH4Cl>NH3·H2O。采用HCl、NH4Cl和NH3·H20预处理后,汽爆甘草中半纤维素脱除率最高分别达到85.29%、68.12%和63.08%;酸不溶木质素最高增加3.57倍、2.22倍和1.45倍。半纤维素降解生成有机酸形成的弱酸性环境促使甘草结构进一步被解构,纤维结晶度增加,热稳定性降低。上述变化形成的热酸性环境提高了氢质子进攻GL糖苷键的可能,促进了 GL转化,同时甘草致密结构的破坏促进了 GL及其转化产物的溶解和扩散。进一步研究常规和催化汽爆甘草中GL及其转化产物的提取动力学行为,阐明汽爆对GL及其转化产物的破壁促溶作用机制。结果表明:汽爆后GL及其转化产物提取得率在2 h提取时间内均达到最大值,与原料相比,提取平衡时间缩短80%以上且扩散系数D值增加2倍以上,表明汽爆后甘草GL及其转化产物的提取效率显着增强。通过酸沉和大孔树脂动态洗脱等方法对汽爆甘草中GL及其转化产物进行纯化,获得甘草甜味剂粗品,纯化后其纯度由2.98%提升到35.97%。
牛志超[5]（2019）在《新疆甘草中甘草酸的提取纯化工艺研究》文中认为甘草酸是甘草中含有的一种三萜皂甙类化合物,同时也是甘草中重要的化学成分之一,在很多领域都有着广泛的应用。为了确定一条适合工业化生产的甘草酸提取纯化工艺路线,本文以新疆野生甘草为原料,分别对甘草酸的含量测定、提取方法以及分离精制进行了系统研究。首先论文采用紫外分光光度法对甘草酸的含量进行了分析测定,精密度实验以及重复性实验结果表明,该方法的准确度高,可靠性强。其次通过实验对甘草酸的提取方法进行了研究,在比较了不同溶剂的提取效果后选择乙醇溶液作为提取溶剂,利用热回流法和超声波法进行甘草酸提取实验。通过单因素实验分别考察了不同因素对甘草酸提取效果的影响,在此基础上进行正交优化实验确定了甘草酸热回流提取的最佳条件为:固液比1:20（g/m L）,提取时间2 h,提取温度80℃,超声波法的最佳提取条件为:超声功率180 w,提取温度70℃,提取时间75 min,固液比为1:20（g/m L）。最后使用膜分离技术对甘草酸提取液进行纯化精制,通过研究影响甘草酸纯化结果的因素,确定了甘草酸最佳精制条件为:膜孔径0.10μm,操作压力0.10MPa,药液温度为30℃,过膜精制后甘草酸产品纯度达到85.32%,工艺简单易行,成本较低,而且产品纯度高,适合工业化运行。
王郡[6]（2019）在《甘草查尔酮A和B的制备、抗癌活性与机理》文中研究说明甘草作为卫生部颁布的药食同源的资源之一,具有抗肿瘤、抗菌、抗病毒、抗炎、免疫调节等多种活性。本论文以甘草为材料,研究甘草黄酮的提取、分离纯化出甘草查尔酮A和甘草查尔酮B;明确甘草查尔酮A和甘草查尔酮B诱导人肝癌HepG2细胞的凋亡及其机理;最后,利用转录组和miRNA组学技术,从mRNA和miRNA整体水平明确甘草查尔酮A和甘草查尔酮B处理对HepG2肝癌细胞的调控。研究结果明确了甘草查尔酮A和甘草查尔酮B的抗癌机制,为把甘草开发为特殊医学食品建立了基础。甘草黄酮提取条件的优化及其分离鉴定。利用超声波辅助提取甘草黄酮的工艺优化为:乙醇浓度64.38%、提取时间2.1h、超声功率112.42W、液料比30.15:1;在该条件下最大提取率为6.56%。利用高速逆流色谱技术和硅胶柱层析技术分离纯化得到甘草查尔酮A和甘草查尔酮B。甘草查尔酮A诱导肝癌HepG2细胞凋亡及其机理。以制备的甘草查尔酮A处理肝癌HepG2细胞,甘草查尔酮A能显着抑制HepG2细胞的增殖,24h的IC50为65.96μM。甘草查尔酮A阻滞细胞周期在G2/M期,诱导细胞凋亡,并引起细胞内ROS水平的上升。甘草查尔酮A处理后,细胞周期相关基因的表达量发生变化,Survivin、Cyclin B1以及CDK1的表达量降低,Weel、p21、Cyclin D1和JNK1的表达量上升。甘草查尔酮A通过调控死亡受体通路和线粒体等通路的基因表达诱导HepG2细胞的凋亡,甘草查尔酮A处理后上述通路中的DR3、DR5、Caspases3、Caspases 8、Caspases 10、Fas、Bad、Bax、Bcl-2、Bak和PUMA基因的表达显着上升,PKCε、p70S6K和Akt的表达下降。因此,甘草查尔酮A通过调控死亡受体信号通路、线粒体信号通路中相关基因的表达,促使HepG2细胞凋亡。甘草查尔酮B诱导肝癌HepG2细胞凋亡及其机理。甘草查尔酮B对HepG2细胞的抑制能力低于甘草查尔酮A,24h的IC50为110.15μM。甘草查尔酮B阻滞细胞周期在G2/M期,诱导细胞凋亡,并引起细胞内ROS水平的上升。甘草查尔酮B处理后,细胞周期相关基因的表达量发生变化,CDK1、Cyclin B1、CHK2、CDC14B和CDC7的mRNA表达下调,而ZBTB17、CDC20、PKMYT1、GADD45A、GADD45B、SFN、CDKNIC、p21和p53的表达显着上调。Cyclin B1、p21、p53、CDK1和p-CHK2的蛋白表达与mRNA表达趋势一致。死亡受体途径的相关基因在mRNA水平（TNF、TNF-R1、Caspase8、Caspases 8、Fas、FasL、FOS、JUN）的表达以及在蛋白水平（TNF-R1、Fas、Caspases 8）的表达均上调。线粒体途径中,除Bcl-xl外,Bid、Bak、PUMA、DIABLO、ENdoG、Caspase 9和Caspase 3的mRNA和蛋白表达水平均增加。Caspases 8和Caspase 9的抑制剂可以抑制甘草查尔酮B诱导的细胞凋亡。甘草查尔酮B通过调控死亡受体信号通路、线粒体信号通路路中相关基因的表达,促使HepG2细胞凋亡。甘草查尔酮A、B处理对肝癌HepG2细胞mRNA整体水平的影响。依据前面得出的IC50值,用浓度为70μM的甘草查尔酮A以及浓度为120μM的甘草查尔酮B处理HepG2,利用转录组技术明确其mRNA水平差异表达谱。甘草查尔酮A处理24h后,HepG2细胞表达量上调的基因有3414个,下调基因有2647个。甘草查尔酮B处理24h后,HepG2细胞表达量上调基因有2928个,下调基因有2601个。甘草查尔酮A处理后的差异基因主要富集在MAPK信号通路、FoxO信号通路和p53信号通路。甘草查尔酮B处理的差异基因主要富集在PI3K-Akt信号通路、MAPK信号通路、Wnt信号通路。甘草查尔酮A、B处理对肝癌HepG2细胞miRNA整体水平研究的影响。利用浓度为70μM的甘草查尔酮A以及浓度为120μM的甘草查尔酮B处理肝癌细胞HepG2,调查miRNA整体水平的变化。甘草查尔酮A处理24h后的上调的miRNA有54个,下调的miRNA有48个。甘草查尔酮B处理24h后的上调miRNA有50个,下调的miRNA有42个。甘草查尔酮A处理诱导的差异表达的miRNA的靶基因主要富集在MAPK信号通路、PI3K-Akt信号通路及Ras信号通路。甘草查尔酮B处理诱导的差异表达的miRNA的靶基因主要富集在MAPK信号通路、PI3K-Akt信号通路以及Rap1信号通路。miRNA组学的结果与转录组表达谱的结果一致。
梁霞[7]（2019）在《甘草酸的分离纯化工艺研究》文中提出甘草是一种豆科植物,含有许多有效活性成分。其中,甘草酸是其主要的有效成分之一,在食品、医药等领域有重要应用。为寻求一条得到高纯度甘草酸的工艺路线,本文以乌拉尔甘草为原料,研究了甘草酸的提取及纯化精制工艺,该工艺为高纯度甘草酸的工业生产提供了坚实的理论依据。以甘草酸提取率为指标,优化了复合酶和超声辅助两步法提取甘草中甘草酸的工艺条件。结果表明,甘草原料为1g时,复合酶法提取阶段的最佳工艺条件为:复合酶比例（果胶酶:纤维素酶）1:3（U/U）,复合酶用量175U/g·底物,pH5.5,时间1 h,温度50℃,原料粒度40目,料液比1:25（g/mL）;超声辅助提取阶段最佳的工艺条件为:提取溶剂20%乙醇,料液比1:35（g/mL）,超声功率350 W,时间15 min,温度40℃。在最佳工艺条件下,甘草酸一次提取率可达（90.44±0.14）%。以吸附率及解吸率为指标,从7种大孔吸附树脂中筛选出初步纯化甘草酸的最佳树脂HPD722,并研究了该树脂的动态吸附及解吸工艺条件。结果表明,HPD722最佳动态吸附条件为:上样量7 BV,上样液浓度6.5 mg/mL,上样液pH 7.0,上样液流速3 BV/h;HPD722最佳动态解吸条件为:洗脱液乙醇最佳浓度为70%,洗脱液体积3 BV,洗脱液流速2 BV/h。在最佳动态吸附及解吸工艺条件下,采用HPD722对复合酶和超声辅助两步法提取得到的纯度为30.07%的甘草酸粗品进行纯化,纯化后甘草酸纯度可达（70.65±0.62）%,收率可达（80.50±0.51）%。对经大孔吸附树脂纯化后的甘草酸精制品进行活性炭脱色及醇沉处理,得到纯度为76.96%的甘草酸精制品。再采用乙醇重结晶进一步纯化甘草酸,并研究其最佳工艺条件,结果表明,乙醇重结晶甘草酸的最佳工艺条件为:重结晶剂乙醇最佳浓度为100%,料液比1:15（g/mL）,结晶温度24℃,结晶时间24 h,重结晶次数5次。在最佳重结晶工艺条件下,甘草酸的纯度可提高到（95.22±0.32）%,收率可达（54.30±0.43）%。
李雪玲[8]（2014）在《名优中成药“安胃疡胶囊”制造工艺关键技术研究》文中研究指明研究背景安胃疡胶囊是惠州市九惠制药股份有限公司的拳头产品,是国家中药保护品种,国家医保品种,是由甘草黄酮制成的五类新药（原二类）。该药荣获“国家级新产品”、“广东省优秀新产品”、“广东省科技进步奖三等奖”、“惠州市惠城区科学技术进步二等奖”称号,是广东省第一个得到国家发改委支持的中药高技术产业化示范工程项目（项目名称为《安胃疡及甘草黄酮高技术产业化示范工程》）,2000年获国家科技部“科技型中小企业技术创新基金”。药效学研究证明,本品能有效抑制胃液和胃蛋白酶的分泌,明显抑制胃液游离酸和总酸,降低胃酸浓度,修复胃及十二指肠溃疡粘膜,促进溃疡的愈合。对多种实验性溃疡模型有确切抗溃疡作用。临床研究表明安胃疡胶囊对慢性浅表性胃炎总有效率为91.83%。安胃疡胶囊的原料是甘草黄酮,存在着口服剂量大,溶解性较差,生物利用度低,日服用次数偏多等缺点。在提取工艺方面,采用酸碱法提取甘草渣中的甘草黄酮,方法复杂,环节多,质量不稳定。在质量标准方面,目前仍然是用重量法来测定总黄酮含量,质量控制方法粗糙,无法反映整体质量,质量标准无法与国际接轨,作为一个名优中成药的内涵还未得到充分展示,缺乏知识产权保护。目的本课题主要是对安胃疡胶囊的原料甘草渣制定准确、灵敏、简单的质量标准,从基源上开始控制安胃疡胶囊的质量,使其生产和质量稳定安全可控。同时采用生物酶解技术联合醇提法对甘草渣中的黄酮类成分进行提取后采用大孔吸附树脂进行分离纯化代替之前的醇提-碱溶酸沉法,节省成本,降低对环境的污染,在此基础上对精制后的黄酮类成分采用波长切换技术建立HPLC指纹图谱技术对安胃疡的质量标准进行新的提高,使其能够真正反映安胃疡内在的整体质量。方法1.安胃疡中总黄酮的含量测定研究为选择能够较为准确反映安胃疡中甘草黄酮含量的标准品,采用以甘草苷、甘草素、甘草查尔酮A、柚皮苷等对照品的碱性比色法和以芦丁为对照品的硝酸铝比色法,将供试品与对照品进行相同的显色方式处理后,采用紫外检测在200～600nm处进行全波长扫描,确定合适的对照品。2.安胃疡原料的质量标准研究在《中国药典》2010版甘草项下薄层鉴别,含量测定和一般检查项的基础上,对安胃疡的原料药材甘草渣进行质量标准的修订。鉴别项以甘草酸铵为对照品,甘草和胀果甘草为对照药材进行薄层色谱鉴别;含量测定项包括采用高效液相色谱法测定甘草渣中甘草酸铵和甘草苷的含量以及采用紫外分光光度法测定甘草渣中总黄酮的含量。同时对一般检查项中的水分、总灰分、酸不溶性灰分亦进行了测定。3.安胃疡提取工艺优化研究采用生物酶解技术联合醇提法对安胃疡原料药材甘草渣中黄酮类物质提取进行研究,以甘草渣中总黄酮含量为指标,甘草苷为对照品的碱性比色法,采用紫外分光光度法测定总黄酮含量,通过对酶品种、加水量、酶解温度、酶解时间、酶解pH值等进行单因素筛选优化酶解工艺,同时为了考察这些因素对提取的协同作用,在单因素试验优化基础上,选用对酶解影响较大的3个因素,各取3个水平,进行L9（34）正交试验优化,筛选出酶解甘草渣的最优工艺。在酶解基础上,对影响乙醇提取法影响较大的提取方法、醇提时间、醇提浓度、乙醇体积、醇提温度、提取次数等进行单因素筛选,再采用正交试验法对醇提工艺进行优化,确定最佳醇提工艺。4.安胃疡精制工艺优化研究以酶解醇提甘草渣得到的浓缩液为研究对象,以浸膏得率和甘草总黄酮纯度为指标,对 D101、X-5、AB-8、S-8、D301、NKA-2、NKA-9 7 种大孔吸附树脂采用静态吸附试验进行筛选。采用AB-8大孔树脂进行动态吸附条件的筛选,单因素筛选对包括药液pH值、上样质量浓度、上样流速、径高比等在内的吸附条件以及包括水洗除杂体积、洗脱液浓度、洗脱液pH值、洗脱体积、洗脱流速等在内的洗脱条件进行筛选,并在单因素试验的基础上,采用L9（34）正交试验分别对吸附条件和洗脱条件进行优化,以筛选最优的吸附洗脱条件。5.HPLC法建立安胃疡黄酮类成分的指纹图谱采用高效液相色谱法波长切换技术建立安胃疡原料药材甘草渣和安胃疡浸膏粉的指纹图谱,指认出其中的甘草苷、甘草素、异甘草苷、异甘草素、甘草查尔酮A和甘草酸铵等物质,并在此基础上建立安胃疡原料药材以及浸膏中甘草黄酮类物质的的指纹图谱。结果1.安胃疡总黄酮的含量测定研究为了选择适宜的对照品,建立能够准确测定安胃疡胶囊中甘草总黄酮含量的方法。针对甘草苷、甘草素、甘草查尔酮A、柚皮苷和供试品溶液采用10%KOH溶液进行显色后全波长扫描,发现甘草苷和样品溶液的最大吸收波长在337nm处,且全波长扫描后得到峰形基本一致,而甘草素、柚皮苷均是在440nm左右处有最大吸收波长,甘草查尔酮A则在410nm有最大吸收波长,芦丁对照品和样品经Al2（N03）3-NaOH-NaN02显色后最大吸收波长分别为510nm和363nm。所以选用甘草苷为对照品应用于紫外分光光度法测定甘草总黄酮成分准确度较高,是切实可行的含量测定方法。2.安胃疡原料的质量标准研究结合《中国药典》2010版一部甘草项下的薄层鉴别项、含量测定和一般常规检查项目,对安胃疡原料甘草渣的性状进行描述,鉴别项以甘草酸鞍为对照品,甘草和胀果甘草为对照药材,采用10%氢氧化钠溶液制备的硅胶G薄层板上,以乙酸乙酯-甲酸-冰醋酸-水（15:1:1:2）为展开剂,显色剂为10%硫酸乙醇溶液,在105℃加热至斑点显色清晰,置紫外光灯（365nm）下检视,结果供试品在与甘草酸铵相对应的位置并没有斑点出现,与甘草对照药材和胀果对照药材显相同颜色的荧光斑点。一般项目检查包括水分、灰分以及酸不溶性灰分、水分。水分含量约为7.66%,灰分约为7.94%,其限度规定为甘草渣中灰分含量不得高于8.3%,酸不溶性灰分在2.17%左右,其限度规定为甘草渣中酸不溶性灰分含量不得高于2.5%。含量测定主要包括对甘草总黄酮的测定以及甘草渣中甘草苷和甘草酸铵的含量测定。总黄酮的测定是以甘草苷为对照品,10%KOH溶液作为显色剂,在波长337nm处进行测定,建立了测定甘草渣中总黄酮含量的紫外分光光度法,并应用此方法对5批甘草渣进行了含量测定,表明甘草苷回归方程为:y=5.462x-0.0083（r=0.9997）,其在 0.00184～0.0092 mg.mL-1 浓度范围内线性关系良好,同时进行了相应的方法学考察。5份样品的平均含量为1.81%,限度范围为甘草渣中总黄酮含量不得低于1.45%。采用HPLC法对甘草渣中甘草苷和甘草酸铵的含量进行测定,采用超声处理样品,以乙腈-0.05%磷酸为流动相进行梯度洗脱,流速为0.7mL.min-1,检测波长为237nm,柱温25℃。结果回归方程分别为:y甘草苷=14314x+31.44（r=0.9992）;y甘草酸铵=3892.9x+21.473（r=1）。结果表明,甘草苷在0.222～1.11mg.mL-1浓度范围内,甘草酸铵在0.36～2.16 mg·mL-1浓度范围内,峰面积与浓度呈良好的线性关系。甘草苷和甘草酸铵的回收率分别为100.74%和99.34%,RSD分别为1.38%和2.50%,不同批次甘草苷含量在0.1180～0.3973mg·g-1之间,平均含量为0.019%,甘草酸铵的含量在5.0568～6.3628 mg·g-1之间,平均含量约为0.57%,求出平均值后下调20%,得出甘草渣中甘草苷的含量不得低于0.015%,甘草酸铵的含量不得低于0.46%。3.安胃疡提取工艺优化研究本研究在乙醇提取之前,通过单因素筛选和正交试验对安胃疡的酶解工艺参数进行了优化,并在此基础上进一步优化了醇提工艺参数。实验结果表明,酶辅助提取最佳的工艺条件为:采用1g纤维素酶和10倍量的水50℃水浴酶解90min。在确定的酶解条件下进行醇提工艺的优化,结果表明,醇提的最优工艺为:采用10倍量80%乙醇80℃水浴加热回流90min提取两次,得到的浸膏中总黄酮收率为4.40%,较超声单一醇提的收率提高了 1.43倍。4.安胃疡精制工艺优化研究通过7种大孔吸附树脂对安胃疡中甘草黄酮的静态吸附试验,筛选出最佳树脂。结果表明:AB-8大孔树脂对甘草渣总黄酮的吸附性能最好,吸附率和解吸率分别为67.90%和65.36%。AB-8大孔树脂对甘草渣总黄酮吸附的最佳条件为:径高比为1:10、上样量为20mL、药液pH值为5.0、药液质量浓度为2.Omg·mL-1、吸附流速为2.0mL·min-1。而在此吸附条件的基础上,解吸附的最佳条件是先采用蒸馏水40mL洗大孔树脂柱至流出液澄清,再采用pH值为10.0的70%乙醇100mL以1.0mL·min-1的流速进行洗脱。通过本工艺得到的甘草黄酮得率为4.98%,纯度达56.83%。说明采用AB-8大孔树脂对甘草黄酮进行纯化的工艺可行。5.HPLC法建立安胃疡黄酮类成分的指纹图谱采用高效液相色谱波长切换技术建立安胃疡原料药材甘草渣和安胃疡浸膏粉中甘草总黄酮类物质采用计算机软件对色谱峰数据进行评价,建立了安胃疡甘草黄酮类成分的HPLC指纹图谱。结果表明,主要峰群的整体图貌基本一致,其中指认了甘草苷、甘草素、甘草查尔酮A、异甘草苷、异甘草素等物质,制定了安胃疡中甘草黄酮类化合物的指纹图谱。通过建立甘草黄酮类成分的指纹图谱,可利用其特征峰有效地建立以反映安胃疡及其制剂整体化学特征的科学、合理、可行的安胃疡质量控制新方法。结论1.采用甘草苷为对照品应用于紫外分光光度法中测定安胃疡中甘草总黄酮的含量准确度较高,是切实可行的含量测定方法。2.在安胃疡原料的质量标准研究中,对甘草渣进行水分,灰分和酸不溶性灰分的限度测定,薄层鉴别,含量测定等方面的研究。含量测定包括高效液相色谱法测定甘草酸铵和甘草苷的含量以及采用紫外分光光度法测定甘草总黄酮的含量,方法简单可行,为建立安胃疡中黄酮类成分的质量标准提供理论依据。3.在甘草渣中总黄酮提取工艺研究中采用酶解联合乙醇提取法对甘草渣中的总黄酮进行提取,甘草总黄酮收率较超声单一醇提的收率提高了 143.09%,说明采用酶法辅助提取甘草渣中黄酮类物质,可以明显提高总黄酮的提取率,方法简单可行,成本低廉。4.对酶解醇提得到的提取液采用大孔树脂进行精制纯化,结果为AB-8大孔树脂对甘草渣总黄酮的吸附性能最好,而通过本工艺得到的甘草黄酮得率为4.98%,纯度达36.83%。这说明AB-8大孔树脂纯化安胃疡中的甘草黄酮效果较好,工艺的重复性和稳定性良好,适于工业化生产。5.以精制后得到的浸膏为原料,采用高效液相色谱波长切换技术建立安胃疡甘草黄酮类物质一测多评含量测定方法,通过建立的甘草黄酮类成分的指纹图谱,可利用其特征峰有效地建立反映安胃疡及其制剂整体化学特征的科学、合理、可行的安胃疡质量控制新方法。
龙佳朋[9]（2014）在《大孔吸附树脂对天然甜味剂分离纯化应用研究》文中认为我国是拥有众多天然甜味剂的大国,这些天然甜味剂被广泛应用于医药、化工、食品等行业,随着经济的快速发展和人们生活水平的不断提高,甜味剂获得越来越多的关注。甘草甜素、甘草黄酮、甜菊糖等都是常见天然甜味剂。而且,不同于其它甜味剂,上述甜味剂山于它们所具有的特殊的化学和物理性质,在医学领域被广泛应用,主要应用于抗炎、抗病毒、提高免疫力等方面。目前,天然甜味剂的提取与精制是制约甜味剂发展的主要因素。对于甜味剂的提取,仍限于传统方法。因此,针对天然甜味剂开发出一条绿色、无污染、高提取率的技术是至关重要的。大孔吸附树脂（MAR）分离纯化方法已被广泛应用于天然产物有效成分的分离纯化研究,并有部分成果已经实现了工业化生产。然而,关于如何实现应用MAR技术分离纯化甘草甜素、甘草黄酮、甜菊糖的工作仍处于实验室研究阶段,主要研究内容是如何同时提高吸附量、解吸量和产物纯度。本论文对甘草甜素、甘草黄酮、甜菊糖的分离纯化进行了系统研究。主要包括：一、甘草酸和甘草黄酮的分离纯化研究通过复合酶-氨性醇提取法对甘草中的甘草酸进行提取,并采用MAR混合床技术对其进行分离,以吸附量、吸附率、解吸量、解吸率等为指标,高效液相色谱仪和紫外分光光度计等仪器作为检测手段,通过MAR对甘草酸和甘草黄酮的静态吸附/解吸,实现MAR对甘草酸和甘草黄酮的分离,获得高纯度甘草酸和甘草黄酮,实验结果显示：（1）采用氨性醇-复合酶法对甘草中的甜味剂甘草甜素进行提取,结论如下：酶解温度Tr=40℃,复合酶用量V=25mL,固液比r=1：20,浸提时间t=1.5h,浸提液pH=8,浸提次数n=3,浸提温度T=45℃,浸提液V（CH3CH2OH）∶V（H2O）=7∶3氨水用量V（NH3·H2O）=0.6%在最佳工艺条件下,得到的甘草酸提取率可达87.56%,提取量13.15mg/g。结果表明氨性醇-复合酶提取法的提取率远大于传统方法。（2）采用14种不同极性的MAR对甘草甜素进行分离纯化研究,根据MAR性能参数和甘草酸分子的结构参数相匹配原理,对MAR进行筛选,获得的对甘草甜素分离效果最好的MAR混合床为LZ-49+LZ-51+LZ-54+LZ-66,其质量分配比为m（LZ-19）∶m(LZ-54∶mLZ-66=1：1：1：1,在最佳的工艺条件下,通过HPLC测得MAR对甘草甜素吸附回收率F=80.00%、解吸率D=88.00%、吸附量qa=80.15mg/g、解吸率qe=70.53mg/g,纯度可达到85.00%以上（3）采用19种不同极性的MAR对甘草黄酮进行静态吸附/解吸实验,利用紫外分光光度计对吸附残液和解吸液中的甘草黄酮进行测定,筛选出的最优混合床为LZ-50+LZ-59。之后优化吸附/解吸过程中的工艺条件（吸附温度、吸附pH、解吸温度、解吸pH等）并研究不同模型对其吸附机理的影响。实验结果显示：在最佳工艺条件下LZ-50+LZ-59,混合床对甘草黄酮的吸附的吸附率F=75.00%,解吸率D=89.23%,吸附量qa=15.24mg/g,解吸量qe=13.60mg/g,纯度可达到80.00%以上二、甜菊糖苷的分离纯化研究综合前期工作中对甜菊糖苷粗提物分离理论和应用的研究,采用4种不同极性的MAR对甜菊糖粗提物进行动态吸附/解吸实验,通过HPLC对吸附量和解吸量进行测定,筛选出对甜菊糖分离效果最好的混合床为LZ-72、LZ-73、LZ-75,质量比为m（LZ-72）:m（LZ-73）: m（L.z-75）=3:1:3,研究MAR混合床对甜菊糖的吸附热力学和动力学,结果表明：MAR对甜菊糖的吸附为多分子层物理吸附。优化后所得最佳艺条件为：吸附液pH=6,吸附温度为35℃,吸附135min,解吸液60%乙醇,解吸温度40℃,结果表明：在此条件下经过一个周期的动态吸附/解吸,所得甜菊糖产品的纯度可达到92%以上
刘育辰,王文全,郭洪祝[10]（2010）在《甘草有效成分的提取纯化方法研究进展》文中研究说明作者通过查阅大量文献,对甘草中有效成分的提取方法和纯化方法进行了详细的总结,为甘草化学成分快速、有效的提取、纯化提供方法参考和依据。
二、溶剂对甘草黄酮和甘草酸提取率影响的研究（论文开题报告）
（1）论文研究背景及目的
此处内容要求：
首先简单简介论文所研究问题的基本概念和背景，再而简单明了地指出论文所要研究解决的具体问题，并提出你的论文准备的观点或解决方法。
写法范例：
本文主要提出一款精简64位RISC处理器存储管理单元结构并详细分析其设计过程。在该MMU结构中,TLB采用叁个分离的TLB,TLB采用基于内容查找的相联存储器并行查找,支持粗粒度为64KB和细粒度为4KB两种页面大小,采用多级分层页表结构映射地址空间,并详细论述了四级页表转换过程,TLB结构组织等。该MMU结构将作为该处理器存储系统实现的一个重要组成部分。
（2）本文研究方法
调查法：该方法是有目的、有系统的搜集有关研究对象的具体信息。
观察法：用自己的感官和辅助工具直接观察研究对象从而得到有关信息。
实验法：通过主支变革、控制研究对象来发现与确认事物间的因果关系。
文献研究法：通过调查文献来获得资料，从而全面的、正确的了解掌握研究方法。
实证研究法：依据现有的科学理论和实践的需要提出设计。
定性分析法：对研究对象进行“质”的方面的研究，这个方法需要计算的数据较少。
定量分析法：通过具体的数字，使人们对研究对象的认识进一步精确化。
跨学科研究法：运用多学科的理论、方法和成果从整体上对某一课题进行研究。
功能分析法：这是社会科学用来分析社会现象的一种方法，从某一功能出发研究多个方面的影响。
模拟法：通过创设一个与原型相似的模型来间接研究原型某种特性的一种形容方法。
三、溶剂对甘草黄酮和甘草酸提取率影响的研究（论文提纲范文）
（1）甘草中活性成分连续提取纯化及多孔炭材料制备工艺研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 第1章 绪论 |
| 1.1 甘草 |
| 1.1.1 甘草介绍 |
| 1.1.2 甘草药用价值及前景 |
| 1.2 甘草中主要活性物质 |
| 1.2.1 甘草酸 |
| 1.2.2 甘草多糖 |
| 1.2.3 甘草黄酮 |
| 1.3 甘草活性物质提取研究进展 |
| 1.3.1 甘草酸提取方法研究进展 |
| 1.3.2 甘草多糖提取方法研究进展 |
| 1.3.3 甘草黄酮提取方法研究进展 |
| 1.4 甘草活性物质纯化方法研究进展 |
| 1.4.1 甘草酸及甘草酸盐类的纯化方法 |
| 1.4.2 甘草多糖的分离纯化研究 |
| 1.4.3 甘草总黄酮的分离纯化研究 |
| 1.5 甘草综合提取纯化研究进展 |
| 1.6 生物质残渣的研究进展 |
| 1.6.1 生物质残渣的常规利用研究 |
| 1.6.2 生物质残渣制备多孔材料研究 |
| 1.7 课题研究的意义和主要内容 |
| 1.7.1 课题研究的意义 |
| 1.7.2 课题研究的主要内容 |
| 第2章 甘草酸提取纯化及单钾盐制备工艺研究 |
| 2.1 引言 |
| 2.2 实验材料 |
| 2.3 实验方法 |
| 2.3.1 甘草酸提取纯化的工艺流程 |
| 2.3.2 甘草酸单钾盐的精制工艺流程 |
| 2.3.3 甘草酸及甘草酸单钾盐含量测定 |
| 2.4 甘草酸提取工艺研究 |
| 2.4.1 提取方法对甘草酸提取收率的影响 |
| 2.4.2 提取溶剂对甘草酸提取收率的影响 |
| 2.4.3 固液比对甘草酸提取收率的影响 |
| 2.4.4 提取温度对甘草酸提取收率的影响 |
| 2.4.5 提取时间对甘草酸提取收率的影响 |
| 2.4.6 提取次数对甘草酸提取收率的影响 |
| 2.4.7 甘草酸提取工艺优化筛选 |
| 2.4.8 甘草酸提取工艺重现性研究 |
| 2.5 甘草酸提取液酸化工艺研究 |
| 2.5.1 甘草酸提取液浓缩倍数对甘草酸收率的影响 |
| 2.5.2 甘草酸提取液的p H对甘草酸收率的影响 |
| 2.5.3 甘草酸提取液沉降时间对甘草酸收率的影响 |
| 2.5.4 甘草酸提取液酸化工艺优化与筛选 |
| 2.5.5 甘草酸提取液酸化工艺的重现性研究 |
| 2.6 甘草酸粗品复溶工艺的研究 |
| 2.6.1 复溶固液比对甘草酸收率的影响 |
| 2.6.2 复溶温度对甘草酸收率的影响 |
| 2.6.3 复溶时间对甘草酸收率的影响 |
| 2.6.4 复溶次数对甘草酸收率的影响 |
| 2.6.5 甘草酸粗品复溶工艺优化与筛选 |
| 2.6.6 甘草酸粗品复溶工艺的重现性研究 |
| 2.7 甘草酸单钾盐制备工艺的研究 |
| 2.7.1 复溶液p H对甘草酸单钾盐收率的影响 |
| 2.7.2 冰醋酸用量对甘草酸单钾盐收率的影响 |
| 2.7.3 95%乙醇用量对甘草酸单钾盐收率的影响 |
| 2.7.4 沉降时间对甘草酸单钾盐收率的影响 |
| 2.7.5 甘草酸单钾盐制备工艺优化与筛选 |
| 2.7.6 甘草酸单钾盐制备工艺的重现性研究 |
| 2.8 本章小结 |
| 第3章 甘草多糖的提取纯化工艺研究 |
| 3.1 引言 |
| 3.2 实验材料 |
| 3.3 实验方法 |
| 3.3.1 甘草多糖的提取纯化工艺线路图 |
| 3.3.2 甘草多糖的测定方法 |
| 3.4 甘草多糖醇沉工艺探究 |
| 3.4.1 溶液浓缩倍数对甘草多糖收率的影响 |
| 3.4.2 醇沉的乙醇浓度对甘草多糖收率的影响 |
| 3.4.3 沉降时间对甘草多糖收率的影响 |
| 3.4.4 甘草多糖醇沉工艺优化与筛选 |
| 3.4.5 甘草多糖醇沉工艺的重现性研究 |
| 3.5 三氯乙酸除蛋白纯化甘草多糖工艺研究 |
| 3.6 Sevage法除蛋白纯化甘草多糖工艺研究 |
| 3.6.1 氯仿-正丁醇用量对甘草多糖含量的影响 |
| 3.6.2 剧烈震荡时间对甘草多糖含量的影响 |
| 3.6.3 重复次数对甘草多糖含量的影响 |
| 3.6.4 Sevage法除蛋白纯化甘草多糖工艺优化与筛选 |
| 3.6.5 Sevage法除蛋白纯化甘草多糖工艺重现性研究 |
| 3.7 本章小结 |
| 第4章 甘草总黄酮的提取纯化工艺研究 |
| 4.1 引言 |
| 4.2 实验材料与药品 |
| 4.3 实验方法 |
| 4.3.1 甘草总黄酮的提取纯化工艺流程 |
| 4.3.2 甘草总黄酮的测定 |
| 4.4 甘草渣中甘草总黄酮的提取工艺研究 |
| 4.4.1 溶剂对甘草总黄酮提取收率的影响 |
| 4.4.2 提取固液比对甘草总黄酮提取收率的影响 |
| 4.4.3 提取温度对甘草总黄酮提取收率的影响 |
| 4.4.4 提取时间对甘草总黄酮提取收率的影响 |
| 4.4.5 提取次数对甘草总黄酮提取收率的影响 |
| 4.4.6 甘草渣中总黄酮提取工艺优化与筛选 |
| 4.4.7 甘草渣中总黄酮提取工艺的重现性研究 |
| 4.5 甘草渣中总黄酮的纯化工艺研究 |
| 4.5.1 纯化方法对甘草总黄酮的纯化的影响 |
| 4.5.2 纯化的固液比对甘草总黄酮含量的影响 |
| 4.5.3 萃取时间对甘草总黄酮含量的影响 |
| 4.5.4 萃取次数对甘草总黄酮含量的影响 |
| 4.5.5 甘草总黄酮纯化工艺优化与筛选 |
| 4.5.6 甘草总黄酮纯化工艺重现性研究 |
| 4.6 废液中甘草黄酮的回收 |
| 4.7 本章小结 |
| 第5章 中试放大试验研究 |
| 5.1 甘草酸及甘草酸单钾盐工艺放大 |
| 5.1.1 甘草酸及甘草酸单钾盐工艺中试放大操作规程 |
| 5.1.2 甘草酸及甘草酸单钾盐工艺实验数据及分析 |
| 5.2 甘草多糖提取纯化工艺放大 |
| 5.2.1 甘草多糖提取纯化中试放大操作规程 |
| 5.2.2 甘草多糖提取纯化数据 |
| 5.3 甘草总黄酮提取纯化工艺放大 |
| 5.3.1 甘草总黄酮提取纯化中试放大操作规程 |
| 5.3.2 甘草总黄酮提取纯化数据与分析 |
| 5.4 实验结果对比 |
| 5.5 本章小结 |
| 第6章 甘草渣制备多孔炭电极材料的研究 |
| 6.1 引言 |
| 6.2 实验材料 |
| 6.3 实验方法 |
| 6.3.1 多孔碳制备流程 |
| 6.3.2 电化学表征方法 |
| 6.4 KOH活化工艺对电化学性能的影响 |
| 6.4.1 活化剂的选择 |
| 6.4.2 活化温度的筛选 |
| 6.4.3 活化时间的筛选 |
| 6.4.4 活化剂比例的筛选 |
| 6.5 预处理对电化学性能的影响 |
| 6.5.1 预处理方法的选择 |
| 6.5.2 预炭化温度选择 |
| 6.5.3 二次活化KOH比例筛选 |
| 6.5.4 炭材料的电化学性能表征 |
| 6.5.5 炭材料的XPS表征 |
| 6.5.6 炭材料的TEM与 SEM表征 |
| 6.5.7 炭材料的拉曼与XRD表征 |
| 6.5.8 炭材料的BET表征 |
| 6.6 炭材料实验结果对比 |
| 6.7 本章小结 |
| 结论与展望 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 附录 A 发表与参与的学术论文目录 |
（2）甘草黄酮的提取纯化与水溶性纳米粒子的制备及评价（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 1 绪论 |
| 1.1 引言 |
| 1.2 甘草概况 |
| 1.2.1 甘草的生物学特性 |
| 1.2.2 甘草的资源分布 |
| 1.2.3 甘草的活性成分分类 |
| 1.2.4 甘草的药理活性研究 |
| 1.2.5 甘草的综合利用 |
| 1.3 甘草黄酮研究概况 |
| 1.3.1 甘草黄酮的理化性质 |
| 1.3.2 甘草黄酮的生物活性 |
| 1.3.3 甘草黄酮的提取方法 |
| 1.3.4 甘草黄酮的纯化研究 |
| 1.3.5 甘草黄酮的增溶研究 |
| 1.4 天然产物的提取技术 |
| 1.4.1 胶束和反胶束提取法 |
| 1.4.2 超声提取法 |
| 1.4.3 微波提取法 |
| 1.4.4 超临界流体提取法 |
| 1.4.5 酶提取法 |
| 1.4.6 半仿生提取法 |
| 1.4.7 超高压提取法 |
| 1.5 天然产物的纯化技术 |
| 1.5.1 反溶剂重结晶法 |
| 1.5.2 金属络合法纯化黄酮 |
| 1.5.3 柱层析法 |
| 1.5.4 膜分离法 |
| 1.5.5 高效毛细管电泳法 |
| 1.5.6 高速逆流色谱法 |
| 1.5.7 分子印迹法 |
| 1.6 天然产物的增溶技术 |
| 1.6.1 包合技术 |
| 1.6.2 磷脂复合物技术 |
| 1.6.3 固体分散体技术 |
| 1.6.4 纳米制剂技术 |
| 1.6.5 脂质体技术 |
| 1.6.6 胶束增溶技术 |
| 1.6.7 微粉化技术 |
| 1.6.8 合成水溶性前药技术 |
| 1.7 课题研究的意义、内容与技术路线 |
| 1.7.1 课题研究的意义 |
| 1.7.2 课题研究的内容 |
| 1.7.3 技术路线 |
| 2 甘草黄酮的提取 |
| 2.1 引言 |
| 2.2 实验材料与仪器 |
| 2.2.1 实验材料 |
| 2.2.2 实验仪器 |
| 2.3 实验方法 |
| 2.3.1 UV法测定甘草黄酮 |
| 2.3.2 超声微波辅助胶束提取甘草黄酮中表面活性剂的筛选 |
| 2.3.3 超声微波辅助胶束提取甘草黄酮的工艺优化 |
| 2.3.4 不同提取工艺的能耗比较 |
| 2.4 实验结果与讨论 |
| 2.4.1 芦丁标准曲线的绘制 |
| 2.4.2 表面活性剂的筛选结果 |
| 2.4.3 提取工艺优化结果 |
| 2.4.4 不同提取工艺的能耗比较结果 |
| 2.5 本章小结 |
| 3 甘草黄酮的分离纯化 |
| 3.1 引言 |
| 3.2 实验材料与仪器 |
| 3.2.1 实验材料 |
| 3.2.2 实验仪器 |
| 3.3 实验方法 |
| 3.3.1 HPLC法测定甘草黄酮 |
| 3.3.2 提取液的处理 |
| 3.3.3 金属络合法纯化甘草黄酮 |
| 3.3.4 反溶剂重结晶法纯化甘草黄酮 |
| 3.3.5 DPPH自由基清除能力测定 |
| 3.4 实验结果与讨论 |
| 3.4.1 HPLC法测定甘草黄酮 |
| 3.4.2 提取液的预处理结果 |
| 3.4.3 金属络合法纯化甘草黄酮 |
| 3.4.4 反溶剂重结晶法纯化甘草黄酮 |
| 3.4.5 DPPH自由基清除能力测定结果 |
| 3.5 本章小结 |
| 4 反溶剂重结晶法制备甘草黄酮纳米粒子冻干粉 |
| 4.1 引言 |
| 4.2 实验材料与仪器 |
| 4.2.1 实验材料 |
| 4.2.2 实验仪器 |
| 4.3 实验方法 |
| 4.3.1 UV法测定甘草黄酮 |
| 4.3.2 HPLC法测定甘草黄酮中刺甘草查尔酮和甘草查尔酮A |
| 4.3.3 甘草黄酮纳米混悬液的制备及其工艺优化 |
| 4.3.4 甘草黄酮纳米粒子冻干粉的制备 |
| 4.4 实验结果与讨论 |
| 4.4.1 刺甘草查尔酮和甘草查尔酮A标准曲线的绘制 |
| 4.4.2 单因素实验法优化甘草黄酮纳米混悬液的制备工艺结果 |
| 4.4.3 甘草黄酮纳米粒子冻干粉的制备结果 |
| 4.5 本章小结 |
| 5 甘草黄酮纳米粒子的理化表征及溶剂残留 |
| 5.1 引言 |
| 5.2 实验材料与仪器 |
| 5.2.1 实验材料 |
| 5.2.2 实验仪器 |
| 5.3 实验方法 |
| 5.3.1 SEM、平均粒径及Zeta电位的测定 |
| 5.3.2 物理形态测定 |
| 5.3.3 甲醇溶剂残留 |
| 5.4 实验结果与讨论 |
| 5.4.1 SEM、平均粒径及Zeta电位的分析 |
| 5.4.2 物理形态分析 |
| 5.4.3 甲醇溶剂残留分析 |
| 5.5 本章小结 |
| 6 甘草黄酮纳米粒子的含量测定及体外溶出评价 |
| 6.1 引言 |
| 6.2 实验材料与仪器 |
| 6.2.1 实验材料 |
| 6.2.2 实验仪器 |
| 6.3 实验方法 |
| 6.3.1 UV法测定甘草黄酮的含量 |
| 6.3.2 HPLC法测定刺甘草查尔酮和甘草查尔酮A的含量 |
| 6.3.3 甘草黄酮纳米粒子的体外溶出 |
| 6.4 实验结果与讨论 |
| 6.4.1 甘草黄酮纳米粒子的含量测定结果 |
| 6.4.2 甘草黄酮纳米粒子的体外溶出分析 |
| 6.5 本章小结 |
| 7 甘草黄酮纳米粒子大鼠体内抗氧化性能评价 |
| 7.1 引言 |
| 7.2 实验材料与仪器 |
| 7.2.1 实验材料 |
| 7.2.2 实验仪器 |
| 7.3 实验方法 |
| 7.3.1 MDA含量的测定 |
| 7.3.2 CAT活性的测定 |
| 7.3.3 GSH-PX活性的测定 |
| 7.3.4 T-SOD活性的测定 |
| 7.4 实验结果与讨论 |
| 7.4.1 MDA含量的测定结果 |
| 7.4.2 CAT活性的测定结果 |
| 7.4.3 GSH-PX活性的测定结果 |
| 7.4.4 T-SOD活性的测定结果 |
| 7.5 本章小结 |
| 8 甘草黄酮纳米粒子大鼠体内药代动力学及细胞毒性评价 |
| 8.1 引言 |
| 8.2 实验材料与仪器 |
| 8.2.1 实验材料 |
| 8.2.2 实验仪器 |
| 8.3 实验方法 |
| 8.3.1 药代动力学实验 |
| 8.3.2 细胞毒性实验 |
| 8.4 实验结果与讨论 |
| 8.4.1 药代动力学分析 |
| 8.4.2 细胞毒性实验分析 |
| 8.5 本章小结 |
| 结论 |
| 参考文献 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 |
| 致谢 |
（3）甘草酸锌的清洁生产工艺研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 第1章 文献综述 |
| 1.1 甘草的研究概述 |
| 1.1.1 甘草的生长分布 |
| 1.1.2 甘草中的主要化学成分 |
| 1.1.3 甘草的药理作用 |
| 1.2 甘草酸的研究进展 |
| 1.2.1 甘草酸检测方法 |
| 1.2.2 甘草酸提取方法 |
| 1.3 甘草酸锌的研究进展 |
| 1.3.1 甘草酸锌的定义及主要功能特性 |
| 1.3.2 甘草酸锌的研究现状 |
| 1.4 清洁生产 |
| 1.5 本课题研究目的和意义 |
| 1.6 研究内容 |
| 第2章 甘草酸分析方法的建立 |
| 2.1 引言 |
| 2.2 实验试剂与仪器 |
| 2.2.1 实验试剂 |
| 2.2.2 主要实验仪器 |
| 2.3 实验方法 |
| 2.3.1 标准品溶液的配制 |
| 2.3.2 供试品溶液的制备 |
| 2.3.3 确定色谱条件 |
| 2.4 结果与分析 |
| 2.4.1 系统适用性试验 |
| 2.4.2 线性关系考察 |
| 2.4.3 精密度试验 |
| 2.4.4 稳定性试验 |
| 2.4.5 重复性试验 |
| 2.4.6 加样回收试验 |
| 2.4.7 甘草中甘草酸含量测定 |
| 2.5 本章小结 |
| 第3章 甘草酸提取工艺研究 |
| 3.1 引言 |
| 3.2 实验试剂 |
| 3.3 实验方法 |
| 3.3.1 提取方法选择 |
| 3.3.2 单因素试验设计 |
| 3.3.3 响应面优化试验 |
| 3.3.4 分析方法及数据处理 |
| 3.4 结果与分析 |
| 3.4.1 提取方法选择 |
| 3.4.2 单因素试验 |
| 3.4.3 响应面优化提取甘草中甘草酸工艺参数 |
| 3.5 本章小结 |
| 第4章 甘草酸锌的合成工艺研究 |
| 4.1 引言 |
| 4.2 实验试剂 |
| 4.3 甘草酸锌制备工艺流程 |
| 4.4 实验方法 |
| 4.4.1 甘草酸粗品萃取条件的确定 |
| 4.4.2 甘草酸锌的制备 |
| 4.5 结果与分析 |
| 4.5.1 甘草酸粗品萃取条件的确定 |
| 4.5.2 甘草酸锌合成单因素实验 |
| 4.5.3 甘草酸锌合成正交实验 |
| 4.6 经济效益分析 |
| 4.7 本章小结 |
| 第五章 结论与展望 |
| 5.1 结论 |
| 5.2 展望 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 附录 |
（4）汽爆辅助制备甘草甜味剂的研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 1 前言 |
| 1.1 食品甜味剂概述 |
| 1.1.1 甜味剂作用与分类 |
| 1.1.2 功能性高倍甜味剂 |
| 1.2 甘草糖苷类甜味剂研究进展 |
| 1.2.1 甘草酸、单葡萄糖醛酸甘草次酸和甘草次酸 |
| 1.2.2 甘草酸转化、提取及纯化技术研究进展 |
| 1.3 汽爆技术在药食原料加工应用的研究进展 |
| 1.3.1 汽爆技术的发展和原理 |
| 1.3.2 汽爆技术在药食原料生物炼制领域的应用 |
| 1.3.3 汽爆技术在活性成分提取领域的应用 |
| 1.3.4 汽爆技术在活性成分转化领域的应用 |
| 1.4 课题研究思路与内容 |
| 1.4.1 研究思路 |
| 1.4.2 研究内容 |
| 1.4.3 研究意义 |
| 2 材料与方法 |
| 2.1 实验材料 |
| 2.2 实验试剂 |
| 2.3 实验仪器 |
| 2.4 实验方法 |
| 2.4.1 汽爆甘草样品制备 |
| 2.4.2 汽爆甘草色差分析 |
| 2.4.3 汽爆甘草微观结构观察 |
| 2.4.4 汽爆甘草多孔结构表征 |
| 2.4.5 汽爆甘草化学组分分析 |
| 2.4.6 汽爆甘草红外光谱表征 |
| 2.4.7 汽爆甘草X射线衍射表征 |
| 2.4.8 汽爆甘草热重分析 |
| 2.4.9 甘草酸及其转化产物提取 |
| 2.4.10 甘草酸及其转化产物含量测定 |
| 2.4.11 甘草提取物液质分析 |
| 2.4.12 甘草酸及其转化产物纯化工艺研究 |
| 2.4.13 汽爆过程甘草酸反应动力学模型的建立 |
| 2.4.14 汽爆过程甘草酸反应热力学模型的建立 |
| 2.4.15 统计分析 |
| 3 结果与讨论 |
| 3.1 汽爆甘草理化性质分析 |
| 3.1.1 汽爆甘草表观形貌分析 |
| 3.1.2 汽爆甘草微观结构表征 |
| 3.1.3 汽爆甘草多孔结构分析 |
| 3.1.4 汽爆甘草化学组分分析 |
| 3.1.5 汽爆甘草红外光谱分析 |
| 3.2 酸碱盐催化汽爆甘草理化性质分析 |
| 3.2.1 催化汽爆甘草表观形貌分析 |
| 3.2.2 催化汽爆甘草微观结构表征 |
| 3.2.3 催化汽爆甘草化学组分分析 |
| 3.2.4 催化汽爆甘草红外光谱分析 |
| 3.2.5 催化汽爆甘草X-射线衍射分析 |
| 3.2.6 催化汽爆甘草热力学性质分析 |
| 3.3 汽爆过程甘草酸转化行为的研究 |
| 3.3.1 汽爆强度对甘草酸转化率的影响 |
| 3.3.2 汽爆过程甘草酸转化机理 |
| 3.3.3 汽爆过程甘草酸反应动力学分析 |
| 3.3.4 汽爆过程甘草酸反应热力学分析 |
| 3.3.5 甘草提取物液质分析 |
| 3.3.6 催化汽爆甘草中GL转化率、GAMG和GA生成率的变化规律 |
| 3.3.7 催化汽爆过程甘草酸转化机理 |
| 3.4 甘草酸及其转化产物提取与纯化研究 |
| 3.4.1 汽爆甘草中甘草酸及其转化产物的提取过程研究 |
| 3.4.2 催化汽爆甘草中甘草酸及其转化产物的提取过程研究 |
| 3.4.3 甘草酸及其转化产物纯化工艺的研究 |
| 4 结论 |
| 4.1 总结 |
| 4.2 论文的创新点 |
| 4.3 论文的不足之处 |
| 5 展望 |
| 6 参考文献 |
| 7 攻读硕士期间论文发表情况 |
| 8 致谢 |
（5）新疆甘草中甘草酸的提取纯化工艺研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 引言 |
| 第1章 文献综述 |
| 1.1 甘草概述 |
| 1.2 甘草的研究现状 |
| 1.2.1 甘草化学成分的研究 |
| 1.2.2 甘草资源现状 |
| 1.3 甘草酸概述 |
| 1.3.1 甘草酸及其性质 |
| 1.3.2 甘草酸的应用 |
| 1.4 甘草酸的研究现状 |
| 1.4.1 甘草酸的分析检测方法 |
| 1.4.2 甘草酸的提取方法 |
| 1.4.3 甘草酸的精制方法 |
| 1.5 研究背景及意义 |
| 1.6 论文主要研究内容 |
| 第2章 甘草酸分析方法的建立 |
| 2.1 实验原料与设备 |
| 2.1.1 实验原料 |
| 2.1.2 实验设备 |
| 2.2 实验方法 |
| 2.2.1 标准曲线的绘制 |
| 2.2.2 精密度实验 |
| 2.2.3 重复性实验 |
| 2.3 实验结果 |
| 2.3.1 甘草酸标准曲线 |
| 2.3.2 精密度实验 |
| 2.3.3 重复性实验 |
| 2.4 本章小结 |
| 第3章 甘草酸热回流提取工艺的研究 |
| 3.1 实验原料与设备 |
| 3.1.1 实验原料 |
| 3.1.2 实验设备 |
| 3.2 实验方法 |
| 3.2.1 甘草酸提取工艺流程 |
| 3.2.2 甘草中甘草酸的测定 |
| 3.2.3 提取溶剂的选择 |
| 3.2.4 单因素实验 |
| 3.2.5 热回流正交实验 |
| 3.2.6 不同甘草部位甘草酸含量的测定 |
| 3.3 结果与分析 |
| 3.3.1 提取溶剂的选择 |
| 3.3.2 单因素实验结果 |
| 3.3.3 热回流正交实验 |
| 3.3.4 不同甘草部位的甘草酸含量 |
| 3.4 本章小结 |
| 第4章 甘草酸超声辅助提取工艺的研究 |
| 4.1 实验原料与设备 |
| 4.1.1 实验原料 |
| 4.1.2 实验设备 |
| 4.2 实验方法 |
| 4.2.1 甘草酸含量的测定 |
| 4.2.2 单因素实验 |
| 4.2.3 超声辅助提取正交实验 |
| 4.3 结果与分析 |
| 4.3.1 单因素实验结果 |
| 4.3.2 超声提取正交实验 |
| 4.4 本章小结 |
| 第5章 甘草酸纯化工艺的研究 |
| 5.1 实验原料与设备 |
| 5.1.1 实验原料 |
| 5.1.2 实验设备 |
| 5.2 实验方法 |
| 5.2.1 甘草酸纯化工艺流程 |
| 5.2.2 甘草酸保留率与除杂率的计算 |
| 5.2.3 膜分离技术纯化甘草酸的研究 |
| 5.2.4 酸化剂对甘草酸精制的影响 |
| 5.2.5 酸沉pH对甘草酸精制的影响 |
| 5.3 结果与分析 |
| 5.3.1 膜分离技术纯化结果 |
| 5.3.2 酸化剂对甘草酸纯化的影响 |
| 5.3.3 酸沉pH值对甘草酸纯化的影响 |
| 5.4 本章小结 |
| 第6章 结论与建议 |
| 6.1 结论 |
| 6.2 问题与建议 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
（6）甘草查尔酮A和B的制备、抗癌活性与机理（论文提纲范文）
| 致谢 |
| 摘要 |
| abstract |
| 第一章 引言 |
| 1.1 肝癌概述 |
| 1.2 甘草概述 |
| 1.3 甘草的活性成分 |
| 1.3.1 三帖皂素 |
| 1.3.2 黄酮类化合物 |
| 1.4 甘草黄酮的提取 |
| 1.5 甘草黄酮的纯化 |
| 1.5.1 大孔吸附树脂技术 |
| 1.5.2 硅胶柱层析技术 |
| 1.5.3 高速逆流色谱技术 |
| 1.6 甘草黄酮的生理功能 |
| 1.6.1 抗氧化活性 |
| 1.6.2 抗癌活性 |
| 1.6.3 抗炎活性 |
| 1.6.4 抗菌活性 |
| 1.6.5 降血糖功能 |
| 1.6.6 其他生物学活性 |
| 1.7 细胞周期及其调控 |
| 1.7.1 细胞周期 |
| 1.7.2 细胞周期的调控机理 |
| 1.8 细胞凋亡及其调控 |
| 1.8.1 细胞凋亡 |
| 1.8.2 细胞凋亡的调控机理 |
| 1.9 转录组学在癌症中的研究进展 |
| 1.9.1 转录组学的概念 |
| 1.9.2 转录组学在癌症中的研究进展 |
| 1.10 miRNA在癌症中的研究进展 |
| 1.10.1 mRNA的概述 |
| 1.10.2 miRNA的作用机制 |
| 1.10.3 肿瘤抑制因子和癌基因miRNA的关系 |
| 1.10.4 植物黄酮类成分对癌细胞miRNA表达的影响 |
| 1.11 本论文开展的背景及意义 |
| 1.12 研究内容和技术路线 |
| 1.12.1 研究内容 |
| 1.12.2 研究思路 |
| 1.12.3 技术路线 |
| 第二章 甘草黄酮提取条件优化及甘草查尔酮A、B分离鉴定 |
| 2.1 材料与方法 |
| 2.1.1 材料 |
| 2.1.2 试剂及仪器 |
| 2.1.3 甘草黄酮醇提法工艺流程 |
| 2.1.4 黄酮的检测 |
| 2.1.5 甘草黄酮提取工艺的优化 |
| 2.1.6 甘草查尔酮A的分离与鉴定 |
| 2.1.7 甘草查尔酮B的分离与鉴定 |
| 2.1.8 数据统计与分析 |
| 2.2 结果与分析 |
| 2.2.1 芦丁标准曲线的绘制 |
| 2.2.2 单因素试验分析 |
| 2.2.3 响应面优化分析 |
| 2.2.4 分离的甘草查尔酮A纯度分析 |
| 2.2.5 分离的甘草查尔酮A结构鉴定 |
| 2.2.6 分离的甘草查尔酮B纯度分析 |
| 2.2.7 分离的甘草查尔酮B结构鉴定 |
| 2.3 本章小结 |
| 第三章 甘草查尔酮A诱导肝癌HepG2 细胞的凋亡及其机理 |
| 3.1 材料和方法 |
| 3.1.1 材料 |
| 3.1.2 试剂与仪器 |
| 3.1.3 细胞培养 |
| 3.1.4 MTT |
| 3.1.5 细胞周期检测 |
| 3.1.6 细胞凋亡检测 |
| 3.1.7 细胞内活性氧水平(ROS)检测 |
| 3.1.8 Real time RT-PCR |
| 3.1.9 Western Blot |
| 3.1.10 数据统计与分析 |
| 3.2 结果与分析 |
| 3.2.1 甘草查尔酮A对 HepG2 细胞增殖的抑制 |
| 3.2.2 甘草查尔酮A诱导HepG2 细胞形态的改变 |
| 3.2.3 甘草查尔酮A诱导HepG2 细胞周期停滞及机制 |
| 3.2.4 甘草查尔酮A诱导HepG2 细胞凋亡及其机制 |
| 3.2.5 甘草查尔酮A对细胞内活性氧(ROS)水平的影响 |
| 3.3 本章小结 |
| 第四章 甘草查尔酮B诱导肝癌HepG2 细胞的凋亡及其机理 |
| 4.1 材料和方法 |
| 4.1.1 材料和试剂 |
| 4.1.2 细胞培养 |
| 4.1.3 MTT实验 |
| 4.1.4 细胞周期检测 |
| 4.1.5 细胞凋亡检测 |
| 4.1.6 细胞内活性氧水平(ROS)检测 |
| 4.1.7 Real time RT-PCR |
| 4.1.8 Western Blot |
| 4.1.9 Caspase抑制剂实验 |
| 4.1.10 数据统计与分析 |
| 4.2 结果与分析 |
| 4.2.1 甘草查尔酮B对 HepG2 细胞增殖的抑制 |
| 4.2.2 甘草查尔酮B诱导HepG2 细胞形态的改变 |
| 4.2.3 甘草查尔酮B诱导HepG2 细胞周期停滞及机制 |
| 4.2.4 甘草查尔酮B诱导HepG2 细胞凋亡及其机制 |
| 4.2.5 甘草查尔酮B对细胞内活性氧(ROS)水平的影响 |
| 4.3 本章小结 |
| 第五章 甘草查尔酮A、B处理对肝癌细胞HepG2 转录表达谱的影响 |
| 5.1 材料和方法 |
| 5.1.1 材料 |
| 5.1.2 试剂与仪器 |
| 5.1.3 细胞处理 |
| 5.1.4 总RNA的提取 |
| 5.1.5 转录组mRNA水平生物信息学分析 |
| 5.1.6 Western Blot |
| 5.1.7 荧光定量qPCR验证 |
| 5.2 结果与分析 |
| 5.2.1 测序数据以及质量控制 |
| 5.2.2 基因表达量整体分析 |
| 5.2.3 甘草查尔酮A、B对肝癌细胞HepG2 作用后的差异表达谱 |
| 5.2.4 差异表达基因qPCR验证 |
| 5.2.5 甘草查尔酮A、B处理后HepG2 差异表达的基因的功能富集 |
| 5.2.6 甘草查尔酮A、B处理后HepG2 差异表达基因的信号通路分析 |
| 5.2.7 重要信号通路差异表达基因的蛋白水平分析 |
| 5.3 本章小结 |
| 第六章 甘草查尔酮A、B处理对肝癌HepG2 细胞的miRNA组的影响 |
| 6.1 材料和方法 |
| 6.1.1 材料 |
| 6.1.2 试剂与仪器 |
| 6.1.3 细胞处理 |
| 6.1.4 miRNA的提取 |
| 6.1.5 miRNA生物信息学分析 |
| 6.1.6 miRNA荧光定量qPCR验证 |
| 6.1.7 mRNA荧光定量qPCR |
| 6.2 结果与分析 |
| 6.2.1 测序数据以及质量控制 |
| 6.2.2 Clean reads长度分布 |
| 6.2.3 miRNA聚类分析 |
| 6.2.4 miRNA表达量分析 |
| 6.2.5 差异表达miRNA的 qPCR验证 |
| 6.2.6 差异表达的miRNA的靶基因的功能注释和信号通路富集分析 |
| 6.2.7 甘草查尔酮A、B处理后miRNA与靶基因表达对应分析 |
| 6.3 本章小结 |
| 第七章 总结与展望 |
| 7.1 总结 |
| 7.2 创新点 |
| 7.3 展望 |
| 参考文献 |
| 攻读博士学位期间的学术活动及成果情况 |
| 1 )参加的学术交流与科研项目 |
| 2 )发表的学术论文 |
（7）甘草酸的分离纯化工艺研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 1 前言 |
| 1.1 甘草简介 |
| 1.1.1 甘草的基本特征 |
| 1.1.2 甘草的应用研究 |
| 1.2 甘草的主要化学成分及功能研究 |
| 1.3 甘草酸简介 |
| 1.3.1 甘草酸的结构及性质 |
| 1.3.2 甘草酸的应用研究 |
| 1.4 甘草酸的提取分离研究 |
| 1.4.1 传统提取分离方法 |
| 1.4.2 现代提取分离方法 |
| 1.5 甘草酸的纯化研究 |
| 1.5.1 树脂法 |
| 1.5.2 重结晶法 |
| 1.5.3 超滤膜法 |
| 1.5.4 双水相萃取法 |
| 1.5.5 泡沫法 |
| 1.5.6 高速逆流色谱法 |
| 1.6 甘草酸的测定分析方法 |
| 1.6.1 传统测定分析方法 |
| 1.6.2 现代测定分析方法 |
| 1.7 本论文立题依据、主要研究内容及技术路线 |
| 1.7.1 立题依据 |
| 1.7.2 主要研究内容 |
| 1.7.3 技术路线 |
| 2 材料与方法 |
| 2.1 材料与仪器 |
| 2.1.1 材料与试剂 |
| 2.1.2 主要仪器设备 |
| 2.2 甘草酸的测定方法 |
| 2.2.1 甘草酸的高效液相色谱测定方法 |
| 2.2.2 标准曲线的绘制 |
| 2.3 甘草酸含量、提取率、纯度及回收率的计算 |
| 2.4 甘草原料中甘草酸总含量的测定 |
| 2.5 复合酶和超声辅助两步法提取甘草酸的工艺研究 |
| 2.5.1 复合酶法提取阶段的工艺流程及操作要点 |
| 2.5.2 复合酶法提取阶段的单因素试验设计 |
| 2.5.3 复合酶法提取阶段的工艺优化 |
| 2.5.4 超声辅助提取阶段的工艺流程及操作要点 |
| 2.5.5 超声辅助提取阶段的单因素试验设计 |
| 2.6 甘草酸的精制工艺研究 |
| 2.6.1 甘草酸的精制工艺流程 |
| 2.6.2 甘草酸粗品的制备 |
| 2.6.3 大孔吸附树脂法精制甘草酸的工艺研究 |
| 2.6.4 活性炭脱色、醇沉制备一定纯度甘草酸 |
| 2.6.5 重结晶进一步纯化甘草酸的工艺研究 |
| 3 结果与讨论 |
| 3.1 甘草原料中总甘草酸的含量 |
| 3.2 复合酶和超声辅助两步法提取甘草酸的工艺研究 |
| 3.2.1 复合酶法提取阶段的单因素试验 |
| 3.2.2 RSM优化复合酶法提取阶段的工艺条件 |
| 3.2.3 超声辅助提取阶段的工艺研究 |
| 3.2.4 小结 |
| 3.3 大孔吸附树脂初步纯化甘草酸的工艺研究 |
| 3.3.1 大孔吸附树脂的初步筛选 |
| 3.3.2 初筛大孔吸附树脂静态吸附曲线 |
| 3.3.3 大孔吸附树脂HPD722的动态吸附曲线 |
| 3.3.4 大孔吸附树脂HPD722动态吸附的单因素试验 |
| 3.3.5 HPD722动态解吸液的选择及动态解吸曲线的绘制 |
| 3.3.6 大孔吸附树脂HPD722动态解吸的单因素试验 |
| 3.3.7 小结 |
| 3.4 活性炭脱色及醇沉对甘草酸纯度的影响 |
| 3.5 重结晶进一步纯化甘草酸的工艺研究 |
| 3.5.1 重结晶进一步纯化甘草酸的单因素试验 |
| 3.5.2 小结 |
| 4 结论 |
| 4.1 全文总结 |
| 4.2 论文的创新点 |
| 4.3 论文的不足之处 |
| 5 展望 |
| 6 参考文献 |
| 7 攻读学位期间发表论文情况 |
| 8 致谢 |
（8）名优中成药“安胃疡胶囊”制造工艺关键技术研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| ABSTRACT |
| 第一章 前言 |
| 1. 安胃疡胶囊的研究现状 |
| 2. 甘草黄酮的研究进展 |
| 3. 生物酶解技术在中药提取中的应用 |
| 4. 大孔吸附树脂在中药分离精制中的应用 |
| 5. 中药指纹图谱的研究进展 |
| 6. 立项依据 |
| 第二章 安胃疡总黄酮的含量测定研究 |
| 1. 实验材料 |
| 2. 方法 |
| 3. 结果 |
| 4. 讨论 |
| 第三章 安胃疡原料的质量标准研究 |
| 1. 实验材料 |
| 2. 方法与结果 |
| 3. 讨论 |
| 第四章 安胃疡提取工艺优化研究 |
| 1. 实验材料 |
| 2. 实验方法 |
| 3. 实验结果 |
| 4. 讨论 |
| 第五章 安胃疡精制工艺优化研究 |
| 1. 实验材料 |
| 2. 实验方法与结果 |
| 3. 讨论 |
| 第六章 HPLC法建立安胃疡黄酮类成分的指纹图谱 |
| 1. 实验材料 |
| 2. 方法与结果 |
| 3. 讨论 |
| 全文总结与展望 |
| 参考文献 |
| 附录: 缩略语和中英文对照表 |
| 攻读硕士学位期间成果 |
| 致谢 |
（9）大孔吸附树脂对天然甜味剂分离纯化应用研究（论文提纲范文）
| 摘要 |
| Abstract |
| 第1章 引言 |
| 1.1 天然药材介绍 |
| 1.2 天然甜味剂基本状况 |
| 1.3 国内外甜味剂分布 |
| 1.4 天然甜味剂种类 |
| 1.5 天然甜味剂价值 |
| 1.5.1 在医学上价值 |
| 1.5.2 在生活食品中价值 |
| 1.5.3 在化妆品中价值 |
| 1.6 天然甜味剂药用机理 |
| 1.6.1 甜味剂抗病毒、降糖功效 |
| 1.6.2 甜味剂调节免疫能力功效 |
| 1.6.3 甜味剂抗菌功效 |
| 1.7 天然甜味剂提取方法 |
| 1.7.1 水提法 |
| 1.7.2 氨水提取法 |
| 1.7.3 氨性醇提取法 |
| 1.7.4 超声提取法 |
| 1.7.5 超临界萃取法 |
| 1.8 天然甜味剂的测定方法 |
| 1.8.1 重量法 |
| 1.8.2 薄层扫描法 |
| 1.8.3 紫外分光光度法 |
| 1.8.4 高效液相色谱法 |
| 1.8.5 反相高效液相色谱法 |
| 1.8.6 高效毛细管电泳法 |
| 1.9 天然甜味剂精制方法 |
| 1.9.1 超滤法 |
| 1.9.2 结晶法 |
| 1.9.3 高速逆流色谱分离 |
| 1.9.4 大孔吸附树脂分离方法 |
| 1.10 大孔吸附树脂的介绍 |
| 1.11 大孔吸附树脂的性质和分离原理 |
| 1.12 甜味剂提取和分离存在的问题 |
| 1.13 本论文的研究内容 |
| 第2章 复合酶-氨性醇法提取甘草酸 |
| 2.1 引言 |
| 2.2 实验部分 |
| 2.2.1 仪器和材料 |
| 2.2.2 色谱条件 |
| 2.2.3 对照品溶液的制备 |
| 2.2.4 标准曲线的制备 |
| 2.2.5 甘草酸提取的工艺流程 |
| 2.2.6 测定和计算方法 |
| 2.3 结果与讨论 |
| 2.3.1 不同酶解温度对提取率A影响 |
| 2.3.2 不同复合酶用量对提取率A影响 |
| 2.3.3 正交试验优选酶解工艺 |
| 2.3.4 固液比对提取率A影响 |
| 2.3.5 不同浸提时间对提取率A影响 |
| 2.3.6 不同浸提液pH对提取率A影响 |
| 2.3.7 提取液比例R对甘草酸对提取率A影响 |
| 2.3.8 不同浸提次数对提取率A的影响匈 |
| 2.3.9 不同浸提温度对提取率A的影响 |
| 2.3.10 氨水用量V对提取率A的影响 |
| 2.3.11 正交试验优选氨性醇提取工艺 |
| 2.4 实验重复性 |
| 2.5 本章小结 |
| 第3章 MAR混合床对甘草酸分离纯化的研究 |
| 3.1 引言 |
| 3.2 实验药品及仪器 |
| 3.2.1 实验药品 |
| 3.2.2 实验仪器 |
| 3.3 实验过程 |
| 3.3.1 标准品溶液的制备 |
| 3.3.2 色谱条件 |
| 3.3.3 GA最大吸收波长的测定 |
| 3.3.4 标准曲线的测定 |
| 3.3.5 MAR含水率的测定 |
| 3.3.6 MAR的活化与纯化 |
| 3.3.7 MAR对GA的吸附/解吸 |
| 3.3.8 吸附动力学实验 |
| 3.3.9 吸附热力学实验 |
| 3.4 结果与讨论 |
| 3.4.1 单一MAR筛选 |
| 3.4.2 混合床类型筛选 |
| 3.4.3 混合树脂质量分配比对GA分离纯化效果的影响 |
| 3.4.4 吸附动力学曲线 |
| 3.4.5 吸附热力学曲线 |
| 3.5 MAR混合床分离纯化GA工艺条件优化 |
| 3.5.1 吸附液温度对q_a和P的影响 |
| 3.5.2 吸附液pH值对q_a和P的影响 |
| 3.5.3 解吸液温度对q_e和P的影响 |
| 3.5.4 解吸液pH值对q_e和P的影响 |
| 3.5.5 解吸液比例R对q_e和P的影响 |
| 3.6 本章小结 |
| 第4章 MAR混合床对甘草黄酮分离纯化的研究 |
| 4.1 引言 |
| 4.2 实验材料及主要仪器设备 |
| 4.2.1 实验材料、药品及试剂 |
| 4.2.2 主要仪器设备 |
| 4.3 实验过程 |
| 4.3.1 对照品溶液的制备 |
| 4.3.2 黄酮最大吸收波长的测定 |
| 4.3.3 黄酮标准曲线的测定 |
| 4.3.4 MAR对甘草黄酮分离技术路线图 |
| 4.3.5 MAR含水率的测定 |
| 4.3.6 MAR的活化与纯化 |
| 4.3.7 MAR对甘草黄酮的吸附/解吸附实验 |
| 4.3.8 吸附动力学实验 |
| 4.3.9 吸附热力学实验 |
| 4.4 MAR混合床分离纯化甘草黄酮 |
| 4.4.1 单一树脂类型筛选 |
| 4.4.2 大孔吸附树脂混合床类型筛选 |
| 4.4.3 吸附动力学曲线 |
| 4.4.4 吸附热力学曲线 |
| 4.5 MAR分离甘草黄酮的工艺条件优化 |
| 4.5.1 吸附液pH对q_a和P的影响 |
| 4.5.2 吸附液温度对q_a和P的影响 |
| 4.5.3 解吸液温度对q_e和P)的影响 |
| 4.5.4 解吸液pH对q_e和P的影响 |
| 4.5.5 解吸液比例R对q_e和P的影响 |
| 4.6 本章小结 |
| 第5章 MAR对甜菊糖动态吸附分离和纯化研究 |
| 5.1 引言 |
| 5.2 实验药品及试剂 |
| 5.2.1 主要实验药品 |
| 5.2.2 主要实验仪器 |
| 5.3 实验部分 |
| 5.3.1 MAR含水率的测定 |
| 5.3.2 MAR的活化和纯化 |
| 5.3.3 HPLC测定甜菊糖苷的色谱条件 |
| 5.3.4 对照品溶液的制备 |
| 5.3.5 标准曲线的绘制 |
| 5.3.6 MAR吸附/解吸附实验 |
| 5.3.7 吸附动力学实验 |
| 5.3.8 吸附热力学实验 |
| 5.4 大孔树脂的筛选 |
| 5.4.1 MAR混合床对甜菊糖苷吸附的选择 |
| 5.4.2 吸附动力学曲线 |
| 5.4.3 吸附热力学曲线 |
| 5.5 大孔树脂混合床对甜菊糖苷分离纯化的影响 |
| 5.5.1 吸附液温度对q_a和P的影响 |
| 5.5.2 吸附液pH值对q_a和P的影响 |
| 5.5.3 60%解吸液温度对q_e和P的影响 |
| 5.5.4 60%解吸液pH对q_e和P的影响 |
| 5.5.5 60%解吸液时间对q_e和P的影响 |
| 5.5.6 3:1解吸液温度对q_e和P的影响 |
| 5.5.7 3:1解吸液时间对q_e和P的影响 |
| 5.6 本章小结 |
| 结论 |
| 参考文献 |
| 致谢 |
| 附录 攻读学位期间所发表的学术论文目录 |
（10）甘草有效成分的提取纯化方法研究进展（论文提纲范文）
| 1 提取方法 |
| 1.1 溶剂法 |
| 1.1.1 水提法 |
| 1.1.2 有机溶剂提取法 |
| 1.2 超声提取法 |
| 1.2.1 超声法提取甘草酸 |
| 1.2.2 超声法提取甘草黄酮 |
| 1.2.3 超声法提取甘草多糖 |
| 1.3 超临界CO2萃取法 |
| 1.4 微波法 |
| 1.4.1 微波法萃取甘草酸 |
| 1.4.2 微波法萃取甘草黄酮 |
| 1.5 半仿生提取法(简称SBE法) |
| 1.6 闪式提取法 |
| 1.7 负压空化提取法 |
| 1.8 超高压法 |
| 2 纯化方法 |
| 2.1 大孔树脂法 |
| 2.1.1 大孔树脂法纯化甘草酸 |
| 2.1.2 大孔树脂法纯化甘草黄酮 |
| 2.2 聚酰胺法 |
| 2.3 膜技术 |
| 2.4 泡沫分离法 |
| 2.5 高速逆流色谱法 |
| 2.6 其他方法 |
| 3 小结与讨论 |
四、溶剂对甘草黄酮和甘草酸提取率影响的研究（论文参考文献）
- [1]甘草中活性成分连续提取纯化及多孔炭材料制备工艺研究[D]. 乙凯强. 兰州理工大学, 2021(01)
- [2]甘草黄酮的提取纯化与水溶性纳米粒子的制备及评价[D]. 王子剑. 东北林业大学, 2020(01)
- [3]甘草酸锌的清洁生产工艺研究[D]. 蒋园园. 湖北工业大学, 2019
- [4]汽爆辅助制备甘草甜味剂的研究[D]. 周梦佳. 天津科技大学, 2019(07)
- [5]新疆甘草中甘草酸的提取纯化工艺研究[D]. 牛志超. 中国石油大学(北京), 2019(02)
- [6]甘草查尔酮A和B的制备、抗癌活性与机理[D]. 王郡. 合肥工业大学, 2019(03)
- [7]甘草酸的分离纯化工艺研究[D]. 梁霞. 天津科技大学, 2019(07)
- [8]名优中成药“安胃疡胶囊”制造工艺关键技术研究[D]. 李雪玲. 南方医科大学, 2014(05)
- [9]大孔吸附树脂对天然甜味剂分离纯化应用研究[D]. 龙佳朋. 兰州理工大学, 2014(10)
- [10]甘草有效成分的提取纯化方法研究进展[J]. 刘育辰,王文全,郭洪祝. 中成药, 2010(11)